雞外周血單核細胞

培養基 含FBS、生長添加劑、Penicillin、Streptomycin等

換液頻率 每2-3天換液一次

生長特性 貼壁

細胞形態 巨噬細胞樣

傳代特性 不增殖；不傳代

消化液 0.25%yi蛋白酶

培養條件 氣相：空氣，95%；CO2，5%

雞外周血單核分離自外周血；外周血是除骨髓之外的血液，臨床上常用一些方法把骨髓中的造血干細胞釋放到血液中，再在從血液中提取分離得到造血干細胞，我們把這樣得到的干細胞稱為外周血干細胞，在二十一世紀初人類開始的生命方舟計劃中提出外周血這一新概念。單核細胞起源于骨髓中的造血干細胞，并在骨髓中發育。當它們從骨髓進入血液時仍然是尚未成熟的細胞。與其他血細胞比較，單核細胞內含有更多的非特異性脂酶，并且具有更強的吞噬作用。單核細胞在血液中停留2-3天后遷移到周圍組織中，細胞體積繼續增大，直徑可達50-80μm，細胞內所含的溶酶體顆粒和線粒體的數目也增多，成為成熟的細胞。固定在組織中的單核細胞稱為組織巨噬細胞，它們經常大量存在于淋巴結、肺泡壁、骨髓、肝和脾等器官。激活了的單核細胞和組織巨噬細胞能生成并釋放多種細胞毒、干擾素和白細胞介素，參與機體防衛機制，還產生一些能促進內皮細胞和平滑肌細胞生長的因子。在炎癥周圍單核細胞能進行細胞分裂，并包圍異物。
方法簡介：

公司實驗室分離的雞外周血單核采用密度梯度離心法結合差速貼壁法制備而來，細胞總量約為5×10?cells/瓶。
質量檢測：

公司實驗室分離的雞外周血單核經CD14免疫熒光鑒定，純度可達90%以上，且不含有HIV-1、HBV、HCV、支原體、細菌、酵母和真菌等。

一、細胞培養

1取材 在無菌環境下從機體取出某種組織細胞（視實驗目的而定），經過一定的處理（如消化分散細胞、分離等）后接入培養器血中，這一過程稱為取材。如是細胞株的擴大培養則無取材這一過程。機體取出的組織細胞的培養稱為原代培養。2培養 將取得的組織細胞接入培養瓶或培養板中的過程稱為培養。3凍存及復蘇（可參閱后面有關章節）為了保存細胞，特別是不易獲得的突變型細胞或細胞株，要將細胞凍存。凍存的溫度一般用液氮的溫度－196℃，將細胞收集至凍存管中加入含保護劑（一般為二甲亞砜或甘油）的培養基，以一定的冷卻速度凍存，最終保存于液氮中。在極低的溫度下，細胞保存的時間幾乎是無限的。復蘇一般采用快融方法，即從液氮中取出凍存管后，立即放入37℃水中，使之在一分鐘內迅速融解。然后將細胞轉入培養器皿中進行培養。

二、原代細胞分離

凡是來源于胚胎、組織器官及外周血，經特殊分離方法制備而來的原初培養的細胞稱之為原代細胞。1懸浮細胞的分離方法組織材料若來自血液、羊水、胸水或腹水的懸液材料，的方法是采用1000r/min的低速離心10分鐘。經離心后由于各種細胞的比重不同可在分層液中形成不同層，這樣可根據需要收獲目的細胞。2實體組織材料的分離方法對于實體組織材料，由于細胞間結合緊密，為了使組織中的細胞充分分散，形成細胞懸液，可采用機械分散法（物理裂解）和消化分離法。

三、細胞增殖檢測技術

目前主要有兩種用于檢測細胞增殖能力的方法。一種是直接的方法，通過直接測定進行分裂

的細胞數來評價細胞的增殖能力。另一種是間接的方法，即細胞活力（cell viability）檢測方法，通過檢測樣品中健康細胞的數目來評價細胞的增殖能力。顯然，細胞活力檢測法并不能最終證明檢測樣品中的細胞是否在增殖。如細胞在某一培養條件下會自發啟動凋亡程序，但藥物的干擾可抑制凋亡的發生；這時若采用細胞活力檢測法，顯然可以區分兩種條件下的細胞數量，但我們并不能從藥物干擾組細胞數大于對照組的事實說明藥物可促進細胞增殖的結論。所以最直接的證據應該采用方法一。

取材：首先，用培養液濕潤所取的組織材料，并用鋒利的眼科剪去除附在其上的脂肪和結締組織。接著用平衡液（如PBS或Hanks液）漂洗，再用眼科彎剪將組織塊剪成小塊。多次用PBS或Hanks液漂洗，直到液體清亮、無油滴為止。

接種：用濕潤的吸管吸取切碎的組織塊，輕輕吹到培養瓶皿中，并按一定間距均勻放在培養瓶底壁上。注意不要過多，確保組織塊切面貼在培養瓶底壁上。

培養：將培養瓶翻轉，使瓶底朝上，在種植了組織塊一側的對側面加足培養液，避免組織塊與培養液接觸，然后塞緊瓶塞。將種植了組織塊的一側朝上，靜置于37℃培養箱中。待組織塊貼壁1到3小時后翻瓶，使貼壁的組織塊浸沒在培養液中，繼續靜置。換液：每隔2到3天更換一次培養液，或者根據培養瓶種顏色的變化確定換液時間。

一、原代細胞計數

將血球計數板及蓋片用擦試干凈，并將蓋片蓋在計數板上。

將細胞懸液吸出少許，滴加在蓋片邊緣，使懸液充滿蓋片和計數板之間。

靜置3分鐘。

鏡下觀察，計算計數板四大格細胞總數，壓線細胞只計左側和上方的。然后按下式計算：

細胞數/ml＝4大格細胞總數/ 4×10000

注意：鏡下偶見由兩個以上細胞組成的細胞團，應按單個細胞計算，若細胞團占10%以上，說明分散不好，需重新制備細胞懸液。

二、原代細胞活力

將細胞懸液以0.5ml加入試管中。

加入0.5ml 0.4%臺盼蘭染液，染色2一3分鐘。

吸取少許懸液涂于載玻片上，加上蓋片。

鏡下取幾個任意視野分別計死細胞和活細胞數，計細胞活力。

死細胞能被臺盼蘭染上色，鏡下可見深蘭色的細胞，活細胞不被染色，鏡下呈無色透明狀。

活力測定可以和細胞計數合起來進行，但要考慮到染液對原細胞懸液的加倍稀釋作用。